Manipulação da bomba linfática mobiliza mediadores inflamatórios na circulação linfática

resumo: a estase linfática pode causar edema e o acúmulo de partículas , exsudações, toxinas e bactérias no fluido intersticial dos tecidos, que produz inflamação, alteração do tráfego celular imunológico, hipóxia tecidual, fibrose tecidual e uma variedade de doenças.

Anteriormente, demonstramos que as técnicas de bombeamento linfáticas osteopáticas (LPT) aumentaram significativamente a flufação linfática dos ductos torácicos e intestinais. O objetivo deste estudo foi determinar se o LPT mobilizaria mediadores inflamatórios para a circulação linfática. Sob a anestesia, a linfa torácica ou intestinal dos cães de repouso (pré-LPT) foi coletada, por quatro minutos de LPT e por 10 minutos após o LPT (pós-LPT) e as concentrações linfáticas de interleucina-2 (IL-2) , IL-4, IL-6, IL-10, Interferon, Fator de Necrose Tissue A, Proteína quimiotática Monócito-1 (MCP-1), quimioatracy com queratinócitos, superóxido (SOD) e nitrotirosina (NT). O LPT aumentou significativamente as concentrações do MCP-1 na linfa do duto torácico. Além disso, o LPT aumentou o fluxo linfático de citocinas e quimiocinas do ducto torácico e intestinal em comparação com o respectivo fluxo pré-LPT. Além disso, o LPT aumentou o fluxo linfático de SOD e NT. Dez minutos após a interrupção do LPT, o fluxo linfático torácico e intestinal de citocinas, quimiocinas, NT e SOD foram semelhantes aos anteriores ao LPT, que mostra que seu fluxo era transitório e uma resposta ao LPT.

Esta redistribuição de mediadores inflamatórios durante o LPT pode fornecer uma justificativa científica para o uso clínico do LPT para melhorar a infecção de imunidade e tratar.

Palavras-chave: linfa, citocinas, quimiocinas, mediadores inflamatórios, linfa do duto mesentérico, linfa do duto torácico, infecção, edema, sistema imune, espécie reativa de nitrogênio, espécies reativas de oxigênio, imunidade, medicina manipuladora osteopática

Biologia experimental e medicina 2012; 237: 58-63. Doi: 10.1258 / EBM.2011.011220

Introdução

Os osteopáticos desenvolveram manipulações osteopáticas coletivamente conhecidas como técnicas de bombeamento linfáticas (LPT), que são projetadas para melhorar o fluxo linfático.

Resíduos que se acumulam no fluido intersticial do tecido durante a infecção ou edema.3 Clinicamente, foi demonstrado que o LPT melhora os anticorpos específicos da vacina, 4.5 e reduz a duração da hospitária e a duração do uso de antibióticos em pacientes idosos com pneumonia. Infecção e edema, as citocinas são geradas em flamatory, quimiocinas, espécies de oxigênio reativas (ROS), como superóxido dismutase (SOD) e espécies reativas de nitrogênio (RNS), como nitrotirosina (NT). ), IL-4, IL-6, IL-8, Factor Tissue Necrose (TNFA), Interferon (IFNG), proteína monocitico-1 (MCP-1) e queratinócito-quimioato (KC) induzem a ativação de leucócitos, migração e Respostas imunes mediadas por células para patógenos, 7.8 quando as citocinas inflamatórias de IL-10, como a IL-10, limitam a inflamação, suprimindo as células imunes mediadas pelo sistema imunológico. O que o LPT afeta os sistemas linfáticos e imunológicos2,9-12.

Anteriormente, relatamos que o LPT aumenta as concentrações de leucócitos e a linfa do ducto torácico (TDL) e linfa do ducto mesentérico (MDL) em cães e rats2 , 10,11,13.

O objetivo deste estudo foi determinar se o LPT mobilizaria mediadores inflamatórios para circulação linfática7.8. Além disso, Sod e NT foram medidos.

Os resultados deste estudo fornecem suporte para a aplicação clínica de LPT para melhorar a função do sistema imunológico, e pode explicar, em parte, um mecanismo pelo qual o LPT Protege contra infecção e edema.

Métodos e métodos

Animais

Este estudo foi aprovado pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais e foi realizado. Acordo. Com o guia para os cuidados e uso de animais de laboratório (publicação NIH nº 85-23, revisado em 1996).

Doze cães de mestiço adultos foram utilizados, livres de sinais clinicamente óbvios de doença, para este estudo. Técnicas cirúrgicas Os cães foram anestesiados com pentobarbital de sódio (30 mg / kg, intravenosa). Após intubação endotraqueal, os cães foram ventilados com ar ambiente suplementado de oxigênio para manter o gás arterial normal.Além disso, a pressão arterial foi controlada por um cateter de artéria femoral e permaneceu dentro de limites normais durante todo o experimento.

em seis cães, o peito abriu pela toracracotomia no quarto espaço intercostal esquerdo. O duto torácico foi isolado do tecido conjuntivo e ligado. Fluxo para ligadura, um cateter de PE 60 (diâmetro interno 0,76 mm, diâmetro externo 1,22 mm) foi inserido no conduto e garantido com uma ligadura. A linfa foi drenada à pressão atmosférica através de um cateter cuja ponta de saída foi colocada a 8 cm abaixo do nível do coração para compensar a resistência hidráulica do cateter. A ponta da saída do cateter foi mantida nesta posição para todas as condições experimentais. Aproximadamente 60 minutos após a canulação do ducto torácico, a linfa torácica foi coletada por 4 minutos antes do LPT, por 4 minutos de LPT e por 10 minutos após o final do LPT (após LPT).

Em experimentos separados, a linfa mesentérica foi coletada. Seis cães adicionais foram preparados cirurgicamente para experimentação forex como descrito acima. No entanto, em vez de abrir o tórax, uma incisão abdominal foi feita na linha do meio para expor um grande conduíte linfático mesentérico. Este duto foi isolado, ligado e um cateter 60 foi inserido no conduto e preso com uma ligadura. O cateter foi externalizado através da incisão abdominal, que foi então fechada com uma sutura de seda de 2-0. Aproximadamente 60 minutos após a canulação do conduíte linfático mesentérico, as amostras de linfa mesentérica foram coletadas e o fluxo linfático foi medido como descrito acima para TDL.

técnica de bombeamento linfa

Cães anestesiados foram colocados na posição lateralmente reclinada. Para realizar o Abdominal LPT, o operador contatou o abdômen do animal com as mãos colocadas bilateralmente sob a União Custo-Diafragmática.

A pressão exercida a pressão medial e cranial para comprimir o abdômen até que uma resistência significativa tenha sido encontrada e, em seguida, a pressão foi lançada. As compressões abdominais foram administradas a uma taxa de aproximadamente 1 / para um total de 4 minutos de LPT.

TDL e MDL Medições

Um ensaio multiplex disponível comercialmente foi usado (Millipore, Billerica, Billerica , MA, EE. UU) Para determinar as concentrações de citocinas e quimiocinas em TDL e MDL. Especificamente, os citocinas IL-2, IL-4, IL-6, IL-10, IFNG e TNFA foram medidos e quimiocinas MCP-1 e KC. Uma gama de padrões foi usada, fornecida com o ensaio multiplex, e o teste foi analisado usando o sistema LuminexW 200 com a interface do software XPONENT (Millipore). As concentrações mínimas detectáveis para IL-2, IL-4, IL-6, IL-8, IL-10, IFNG, TNFA, MCP-1 e KC foram 6,4, 28,8, 12.1, 20,3, 1,6, 4,4, 0,4, 8,6 e 1,6 pg / ml, respectivamente. Para calcular o fluxo de citocinas / quimiocinas em TDL e MDL, a respectiva concentração foi multiplicada pelo fluxo linfático durante cada minuto para cada condição, e esses valores foram calculados. As concentrações linfáticas torácicas de SOD (Chemicals Cayman, Ann Arbor, MI, EE. UU) e NT (sondas moleculares, Inc, Eugene ou, EUA) foram medidas usando kits comercialmente disponíveis. O teste de SOD mede as três formas de SOD usando um sal de tetrazol para a detecção de derivados de xanthina oxidase e hidróxido de superóxido. Uma unidade de SOD é definida como a quantidade de enzima necessária para causar um símbolo de 50% do radical do superóxido. A concentração mínima detectável de SOD para este ensaio é de 0,025 u / ml. Ele não reage com superóxido para formar peroxinitrite.14 Posteriormente, o peroxiinitrato reage com proteínas, resultando em um NT mensurável. A concentração mínima detectável para NT deste ensaio é de 2 NMOL / L Sod e NT foi medida apenas no TDL, uma vez que as amostras de MDL não foram suficientes para essas medidas e para os ensaios luminex. Para calcular o fluxo de SOD ou NT no TDL, a respectiva concentração foi multiplicada pelo fluxo linfático durante cada minuto para cada condição, e esses valores foram calculados.

Análise estatística

P> Os dados são apresentados como meios aritméticos + erro padrão (SE). Os valores de vários animais nos respectivos pontos de tempo foram calculados e exibidos em tabelas ou gráficos. Para a avaliação estatística, os dados foram submetidos a análise de variância de medições repetidas ou análise de variância seguida de várias comparações de estudantes-Newman-Keuls. As análises foram realizadas com o GraphPad Prism versão 5.0 para Windows (Software GraphPad, San Diego, CA, USA UU). As diferenças entre os valores médios com pelo menos P 0,05 foram consideradas estatisticamente significantes.

LPT O fluxo intestinal e TDL

semelhante aos nossos relatórios anteriores, 10,11 LPT melhorou o fluxo de TDL e MDL. LPT aumentou 0.90+ 0.19ml / min fluxo TDL durante o pré-LPT em 5,65 + 0,93 ml / min (p, 0,001) e o fluxo subsequentemente diminuiu para 2,07 + 0,28 ml / min durante pós-LPT (p, 0,01). LPT também aumentou o fluxo MDL de 0,30 + 0,03 ml / min durante o pré-LPT para 2,71 + 1,01 ml / min (p, 0,05) e o fluxo subsequentemente diminuiu para 0,32 + 0,25 ml / min durante o pós-LPT (p, 0,05) .

LPT aumentou as concentrações de MCP-1 em TDL

As concentrações de citocinas e quimiocinas em TDL e em MDL são relatadas na Tabela 1. Enquanto as concentrações de citocinas e quimiocinas em O TDL e o MDL tendiam a aumentar durante o LPT em comparação com pré e pós-LPT, o único aumento estatisticamente significativo detectado foi MCP-1 em TDL (p, 0,05). No entanto, durante o LPT, as diferenças entre MDL e TDL foram detectadas nas concentrações de IL-8 e MCP-1. Especificamente, a concentração de IL-8 foi maior durante o LPT em MDL (126%, p, 0,05) em comparação com o TDL. De interesse, a concentração do MCP-1 foi maior em MDL em comparação com o TDL em todas as amostras (Tabela 1). Especificamente, o MCP-1 foi maior no pré-LPT (435%, p, 0,01), durante o LPT (200%, p, 0,01) e pós-LPT (214%, p, 0,01) em comparação com as respectivas concentrações MCP-1

LPT aumentou o fluxo de citocinas e quimiocinas linfáticas.

O efeito do LPT no fluxo de citocinas e quimiocinas em TDL é mostrado na Figura 1. LPT aumentou significativamente o fluxo TDL de IL-6 (615%; P, 0,05), IL-8 (944% , P, 0,001), IL-10 (917%, P, 0,001), MCP-1 (1505%, P, 0,01) e KC (788%, p, 0,001) em comparação com pré-lpt. Além disso, estas concentrações diminuíram após o LPT em 79% em IL-6 (P, 0,05), 55% em IL-8 (P, 0,01), 53% em IL-10 (P, 0,01), 74% no MCP – 1 (p, 0,05) e 57% em KC (p, 0,001). O efeito do LPT no fluxo de citocinas e quimiocinas em MDL é mostrado na Figura 2. LPT aumentou significativamente o fluxo de MDL de IL-6 (394%; p, 0,05), IL-8 (741%, p, 0,001), IL -10 (556%, p, 0,05), MCP-1 (651%, p, 0,01) e KC (496%, p, 0,001).

como visto no TDL, o fluxo de citocinas e quimiocinas no MDL diminuíram após o LPT. O pós-LPT, IL-6 diminuiu em 67% (p, 0,05), IL-8 em 82% (p, 0,001), IL-10 em 86% (p, 0,05), MCP-1 em 86% ( p, 0,01) e KC a 83% (p, 0,001). IL-2, IL-4, IFNG e Cytokines TNFA não foram detectáveis em TDL ou MDL em qualquer um dos pontos temporários.

LPT aumentou o fluxo de ROS e RNS em TDL

O efeito LPT no fluxo de SOD no TDL é mostrado na Figura 3 e o efeito correspondente no NT é mostrado na Figura 4. Embora o LPT não aumentasse significativamente as concentrações de SOD e NT em TDL (Tabela 1), LPT aumentou o fluxo de Sod 367% em TDL de 0,15 + 0,07 u / min pré-LPT para 0,7 + 0.1U / min durante o LPT (p, 0,01). Após o LPT, o fluxo de SOD diminuiu 64% para 0,25 + 0,08 u / min (p, 0,01, figura 3). O LPT aumentou o fluxo NT em TDL, 373% de 5,8 + mmol / l / minpre-lpt a 27,4 + 10,9 mmol / l / min durante o LPT (p, 0,05). Após o LPT, o fluxo NT diminuiu 84% para 4,4 + 1,6 mmol / l / min (p, 0,05, figura 4).

O fluxo de IL-6 foi maior em TDL do que no MDL durante o LPT

O fluxo de citocina e quimiokina em TDL e no MDL durante o LPT é comparado na Figura 5. Durante o LPT, O fluxo IL-6 em TDL aumentou 318% a mais do que o fluxo em MDL (p, 0,01).

discussão

Este estudo é o primeiro a relatar os efeitos do LPT na concentração e fluxo de mediadores inflamatórios no sistema linfático. O LPT não aumentou significativamente as concentrações de citocinas, quimiocinas, ros ou rns na linfa, com exceção do MCP-1; No entanto, o aumento do fluxo linfático de LPT, que aumentou significativamente o fluxo desses mediadores inflamatórios do tecido sanguíneo através do sistema linfático. Especificamente, o LPT aumentou o fluxo de IL-6, IL-8, IL-10, MCP-1 e KC na linfa torácica e mesentérica. Embora não tenha sido medido através do RNSINMDL, o LPT aumentou significativamente o fluxo de SOD e NT em TDL.

completamente, esses resultados sugerem que, aumentando o fluxo linfático, o LPT aumenta a mobilização de mediadores inflamatórios na circulação linfática para o transporte para a circulação sanguínea. As citocinas, quimiocinas, ros e rns são geradas durante a resposta imune inata aos patógenos. Durante a infecção, a IL-6, a IL-8, as citocinas MCP-1 e KC induzem a inflamação ao recrutar e ativar leucócitos, enquanto a IL-10 regula a resposta inflamatória.7,8,15-17 durante a inflamação aguda, as citocinas inflamatórias estimulam a inflamação.Formação de edema ao se acumular no fluido intersticial, que inicialmente reduz a pressão do fluido intersticial, preparando o cenário para o fluxo de proteína e fluido plasmático18,19. Portanto, o LPT pode suprimir o edema, mobilizando os mediadores inflamatórios fora do fluido intersticial para a circulação linfática, bem como aumentando diretamente o flufáficos linfáticos e eliminando o excesso de interstitialmente2,12. O LPT é usado para tratar infecções, 4-6,20,21, mas os mecanismos pelos quais o LPT protege contra doenças infecciosas não são claras. O LPT pode melhorar a proteção contra a infecção, aumentando os mediadores inflamatórios derivados do mesentério misto, permitindo a redistribuição desses mediadores a outros tecidos. Em apoio dessa noção, foi demonstrado que o LINFA redistribui as citocinas e quimiocinas derivadas de mesentery a órgãos distantes22-25.

Além disso, foi mostrado in vitro que a linfa mesentérica pode ativar neutrófilos e aumentar A permeabilidade das células endoteliais.26 Não é surpreendente, que a LPT melhoraria essa redistribuição e a função imunológica potencialmente melhorada. Anteriormente, informamos que o LPT libera leucócitos dos linfonodos mesentéricos em TDL e melhora o fluxo de leucócitos em MDL e TDL.10 após a exposição a microorganismos, fagócitos, como macrófagos e neutrófilos, rosas e rns livres e rns que são bactericidas.7 por Portanto, melhorando o fluxo linfático de leucócitos, citocinas, quimiocinas, ros e rns, o LPT pode facilitar a eliminação da infecção mediada por células. A hipótese foi levantada que após lesão tecidual, o fluxo linfático aumenta rapidamente e fornece o primeiro sinal do sistema linfático para induzir a resposta inflamatória.27 Foi documentado que o linfedema deteriora o tráfego celular imunológico e aumenta a suscetibilidade à infecção. Recentemente, foi demonstrado que o fluxo transmural através das endostelos linfáticos regula as funções de transporte de células e fluidos do endotélio linfático.29 Especificamente, o fluxo transmural aumentou a secreção do ligando de quimioquina, a migração de células dendríticas nos vasos linfáticos , a permeabilidade dos vasos e os vasos de adesão das células regulamentadas da ALZA nos vasos linfáticos. O aumento resultante no esforço de corte induz a expressão do óxido nítrico endotelial em células endoteliais linfáticas humanas; 30 O alto fluxo linfático faz com que a libertação de óxido nítrico endógeno das células endoteliais linfáticas.31.32, por isso, além de libertação de leucócitos na circulação linfática, melhorando o fluxo linfático e a liberação de NT para LINFA, o LPT pode indicar ao linfático sistema que aumenta o tráfego de células imunes. Também comparamos a composição de citocinas linfáticas e quimioquinas entre a linfa torácica e mesentérica. O ducto torácico é um grande copo e transporta a linfa drenada dos órgãos viscerais abdominais (principalmente o fígado e os intestinos), a pele e o músculo esquelético.7,8,33 descobrimos que as concentrações de citocinas e quimiocinas foram maiores em MDL (Tabela 1), que é consistente com o relatório anterior que a maior parte da linfa e proteínas no ducto torácico é derivada de linf.34 mesentérica sugere que, em comparação com a linfa mesentérica, o LINFA derivado do fígado e outros tecidos contam Concentrações baixas de mediadores inflamatórios e, assim, diluíam as citocinas derivadas da mesenteria em TDL.

É importante ter em mente que estes eram animais saudáveis; Portanto, durante a infecção ou inflamação, as concentrações de mediadores inflamatórios em TDL e MDL podem variar.

Conclusão, mostramos que o LPT aumentou transitoriamente o fluxo de quimiocinas, citocinas e espécies reativas de oxigênio e nitrogênio na linfa. Esses achados são consistentes com nossos relatórios anteriores, que mostraram que o LPT transitivamente aumenta as concentrações de leucócitos e o fluxo linfático torácico e mesentérico.

Este estudo foi realizado em animais saudáveis, e o efeito do LPT na libertação linfica de leucócitos e mediadores inflamatórios pode ser intensificado ou alterado durante a infecção. Nossos estudos apóiam a hipótese de que o LPT pode melhorar a resposta imune, melhorando a liberação de leucócitos e mediadores inflamatórios na circulação linfática.

As contribuições dos autores:

Como cirurgia realizada, instrumentação animal, Análise estatística e interpretação de dados, desde que o LPT e preparei o manuscrito. HFD participou do desenho do estudo, a interpretação dos dados e a preparação do manuscrito. LMH projetado e forneceu supervisão para o estudo.Além disso, revisou e interpretou os dados e participou da preparação do manuscrito.

Reconhecimentos

Este estudo foi financiado por subsídios dos Institutos Nacionais de Saúde, Subsídios R01 AT004361 (LMH ) e u19 at002023 (HFD).

Os autores agradecem à Fundação Heritage Osteopathic por seu apoio contínuo para o Ciências Básico da Pesquisa (LMH). Os autores também desejam agradecer a Arthur Williams Jr e Linda Howard por sua assistência na cirurgia de animais, e Jamie Huff e Xin Zhang por sua ajuda na preparação de ensaios imunosorventes ligados a ensaios e ensaios multiplexs.

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